本教材在上一版的基础上修订而成，是国家级一流本科课程配套教材、科学出版社“十四五”普通高等教育本科规划教材。全书包含6章内容及附录，6章分别是细胞生物学研究方法概述、细胞生物学诺贝尔奖研究发现之旅、细胞生物学先进仪器设备、基础性实验、综合性实验和探究性实验；附录包括常用溶液配制方法、细胞生物学实验教学方法案例等内容。数字资源包括部分难点实验操作和先进仪器使用视频、部分实验结果图片等，可扫描二维码查阅。高校授课教师可申请教学课件。

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1982.9-1986.7：西北农业大学，畜牧系畜牧专业，大学本科 1992.9-1995.7：西北农业大学，兽医系兽医内科学，硕士研究生 主持江苏省科技支撑计划1项，参与国家自然科学基因项目1项，江苏省科技支撑计划--农业部分1项，国家环境保护部公益性行业科研专项1项

目录
第三版前言
第一章 细胞生物学研究方法概述 1
第一节 细胞制片方法 1
第二节 细胞化学技术 3
第三节 细胞获取与分离方法 4
第四节 细胞工程技术 7
第五节 基因编辑技术 14
第六节 单细胞测序技术 15
第七节 细胞代谢组学分析方法 16
第八节 细胞能量代谢分析 18
第九节 活细胞成像技术 21
第二章 细胞生物学诺贝尔奖研究发现之旅 23
第一节 细胞感知和适应氧变化机制发现之旅 23
第二节 T细胞表面的免疫负调节分子发现之旅 24
第三节 细胞自噬机制发现之旅 26
第四节 构成大脑定位系统的细胞发现之旅 27
第五节 细胞囊泡运输系统及其调控机制发现之旅 29
第六节 细胞重编程及诱导性多能干细胞发现之旅 31
第七节 染色体端粒及端粒酶对染色体的保护机制发现之旅 32
第八节 器官发育和程序性细胞死亡的基因调节发现之旅 33
第九节 蛋白质地址签的发现之旅 35
第十节 G蛋白及其在细胞中的信号转导作用发现之旅 36
第十一节 蛋白质可逆磷酸化作用的生物调节机制发现之旅 37
第三章 细胞生物学先进仪器设备 39
第一节 细胞观察及形态分析设备 39
第二节 细胞分选设备 52
第三节 细胞制片设备 57
第四节 细胞破碎设备 60
第五节 细胞活力检测设备 62
第四章 基础性实验 66
第一节 细胞制片及染色观察 66
实验1 血细胞涂片的制备及染色观察 66
实验2 植物叶片组织徒手切片的制备及观察 68
实验3 动物组织冰冻切片的制备及染色观察 69
第二节 细胞获取与分离 70
实验4 研磨低渗法分离小鼠脾脏单个核细胞 70
实验5 酶解法制备植物原生质体 72
实验6 密度梯度离心法分离外周血单个核细胞 74
实验7 小鼠腹腔巨噬细胞的富集与分离 75
第三节 细胞器和细胞组分显示 76
实验8 植物细胞线粒体和液泡的超活染色及观察 76
实验9 酸性磷酸酶法显示巨噬细胞溶酶体 78
实验10 牛蛙胸骨剑突软骨细胞高尔基体的中性红染色 79
实验11 细胞中过氧化物酶体的显示 80
实验12 细胞中多糖和游离脂的显示 82
实验13 经典细胞化学法显示细胞DNA和RNA 83
实验14 考马斯亮蓝染色法显示细胞骨架 85
第四节 细胞大小测量与细胞计数 88
实验15 细胞大小的显微测量 88
实验16 细胞计数 89
第五节 细胞生理 91
实验17 哺乳动物红细胞膜的通透性检测 91
实验18 植物细胞质壁分离现象观察及质壁分离法测定基态渗透势 93
实验19 小鼠腹腔巨噬细胞吞噬现象观察及吞噬活性检测 94
实验20 细胞运动观察实验 96
实验21 台盼蓝染色法鉴别死活细胞 98
第六节 细胞分裂 99
实验22 压片法制备植物细胞分裂标本及显微观察 99
实验23 花粉母细胞减数分裂标本制备 101
实验24 滴片法制备悬浮细胞分裂标本 102
实验25 去壁低渗法制备植物细胞染色体分散标本 105
第七节 细胞裂解及效果检测 106
实验26 小鼠腹水瘤细胞裂解及乳酸脱氢酶活性检测 107
第八节 细胞器分离 108
实验27 植物细胞叶绿体的分离 109
实验28 动物细胞线粒体的分离 110
实验29 胞外囊泡提取 112
第五章 综合性实验 115
第一节 细胞分选 115
实验30 免疫磁珠分选法分离小鼠脾脏CD4+T淋巴细胞 115
实验31 T细胞的免疫荧光标记及流式细胞仪分选实验 117
第二节 细胞培养与细胞融合 119
实验32 贴壁细胞的原代培养实验 120
实验33 贴壁细胞的传代培养实验 122
实验34 小鼠骨髓单个核细胞集落形成实验 124
实验35 PEG介导的细胞融合实验 125
第三节 细胞冻存与复苏 127
实验36 细胞冻存与解冻复苏实验 128
第四节 细胞增殖与活力检测 130
实验37 MTT比色法检测细胞增殖与活力 131
实验38 CCK8法检测细胞增殖与活力 132
实验39 ATP生物荧光法检测羟基喜树碱对腹水瘤细胞活力的影响 134
第五节 免疫细胞化学 136
实验40 免疫荧光法显示细胞骨架 136
实验41 酶免疫细胞化学法显示小鼠脾脏淋巴细胞 138
第六节 细胞黏附与迁移分析实验 140
实验42 肿瘤细胞黏附能力分析实验 140
实验43 检测肿瘤细胞侵袭能力的Transwell小室实验 142
实验44 肿瘤细胞迁移的划痕实验 143
第七节 细胞的激活及信号转导分子检测 145
实验45 利用钙离子荧光探针检测细胞内Ca2+浓度 145
实验46 信号蛋白磷酸化水平检测实验 147
实验47 转录因子NF-κB活性检测实验 149
第八节 哺乳动物细胞转基因及表达检测 151
实验48 绿色荧光蛋白基因转染体外培养的小鼠成纤维细胞及表达检测 152
第九节 细胞周期调控与检测 154
实验49 利用流式细胞术分析细胞周期时相 155
实验50 细胞周期蛋白D1基因转染细胞及细胞周期检测 157
实验51 胸腺嘧啶脱氧核苷（TdR）双阻断法同步化培养的动物细胞 159
实验52 秋水仙胺阻抑法分离贴壁培养的哺乳动物M期细胞 160
实验53 植物细胞中期同步化诱导 161
第十节 分裂细胞微核的诱导与检测（细胞遗传毒性） 162
实验54 蚕豆根尖细胞微核的诱导与检测 163
实验55 小鼠骨髓多染性红细胞的诱导与检测 164
实验56 小鼠精巢细胞微核的诱导与检测 166
第六章 探究性实验 169
第一节 肿瘤细胞诱导凋亡及检测 169
实验57 涂片染色法检测凋亡细胞 169
实验58 利用激光共聚焦显微镜及流式细胞仪检测Annexin V-FITC/PI染色的凋亡细胞 171
实验59 凋亡细胞DNA的梯状条带电泳 172
实验60 TUNEL技术原位检测显示凋亡实体瘤细胞 175
第二节 细胞自噬的诱导及检测 177
实验61 MDC染色法检测饥饿法诱导自噬的巨噬细胞 178
实验62 GFP-LC3基因转染法显示无血清饥饿法诱导形成的自噬体 180
第三节 细胞衰老的诱导与检测 181
实验63 H2O2诱导细胞衰老及胞内衰老相关的β-半乳糖苷酶检测 182
实验64 衰老细胞ROS的流式细胞仪检测 183
第四节 细胞分化的诱导及检测 185
实验65 骨髓造血干细胞的诱导分化实验 187
实验66 维甲酸诱导肿瘤细胞分化及检测实验 189
第五节 基因沉默与编辑 191
实验67 RNA干扰沉默绿色荧光蛋白基因 193
实验68 CRISPR-Cas9技术定向敲除哺乳动物细胞基因 194
第六节 细胞端粒酶活性检测实验 198
实验69 肿瘤细胞的端粒酶活性检测 199
附录 202
附录一 常用溶液配制方法 202
附录二 腹水瘤小鼠模型建立方法 203
附录三 细胞培养前的准备工作 204
附录四 细胞生物学实验教学方法案例 206