生物化学实验(第三版)分九章,共50个实验项目,包括糖类物质的检测与分析、脂类物质的检测与分析、氨基酸的检测与分析、蛋白质的分离制备与分析、酶的分离制备与分析、维生素的检测分析、核酸的分离与分析、综合性与设计性实验等常用生物化学实验内容。另外还介绍了生物化学实验的基本知识与基础技能,并在*后附上生物化学实验中常用参数,供实验中参考。 本书适合作为普通高等院校各类理工科专业的生物化学实验课教材或参考书。
针对性强;实用,成熟;将新工科等及有关认证新理念和课程思政元素融入有关教材中,加入二维码,纸数结合。
党的二十大报告指出教育、科技、人才是全面建设社会主义现代化国家的基础性、战略性支撑,将实施科教兴国战略摆在了推动现代化强国建设和实现民族复兴的重要位置。生命科学在战略新兴产业和未来产业中占据着非常重要的位置。 自本书上一版发行以来,已经过去十一年。在此期间,生物化学研究技术不断进步,教学方式也发生了很大变化,在线课程和混合式教学方式大量应用,要求教材适应新的变化,跟上时代步伐,在内容组织和形式上作出相应改变。 本书在第二版基础上修订而成。本次修订过程中,根据各高校实验开设情况和社会需求进行了实验项目调整,保留了上一版中的43项实验,新增了7个对生产应用和研究检测有帮助的实验,合计呈现了50个实验项目。部分使用率不高的实验从纸质教材中删除,但仍然以二维码的方式放在教材数字化内容平台,以备需要时参考。实验目的与要求采用可观测的行为动词表述,并融入课程思政内容。本着学以致用的原则,每个实验项目都进一步说明了实验的应用价值。教材以二维码的形式进行了知识扩展。 本书由曾万勇、王永泽、史振平主编。编写人员及分工如下:武汉轻工大学曾万勇负责第一章、实验2、实验12,刘志国负责实验14、实验22,王丽梅负责实验23、实验29,闫达中负责实验4、实验8、实验42、实验47,林红负责实验20、实验35;湖北工业大学王永泽、李欣、吴正奇、徐宁负责实验13、实验21、实验31、实验34;三峡大学何正权、黄权军负责实验3、实验9、实验30、实验43;信阳农林学院王欣负责实验5、实验15,徐源负责实验6、实验7,王泽夏负责实验1、实验27;成都大学何钢负责实验37、实验38;陕西科技大学薛海燕负责实验24、实验25;武汉生物工程学院王静、吕凯、夏光辉负责实验10、实验26、实验46;青岛科技大学史振平、李红芳负责实验28、实验41、实验44;武汉设计工程学院李婵娟和农筱艺负责实验36、实验39、实验40、实验49、实验50;大连工业大学刘玉欣、李蓉负责实验11、实验18、实验19、实验45、实验48;邵阳学院尹乐斌、伍强、翟中英负责实验16、实验17、实验32、实验33。曾万勇负责统稿。 本次修订时,上一版作者中有部分已经退休或者不再从事生物化学实验教学工作,诚挚感谢他们在前面编写工作中奠定的基础和作出的贡献。 由于时间仓促以及编者水平有限,书中不足之处在所难免,请大家多提宝贵意见,以便我们今后进一步完善。
曾万勇,男,博士,1996年毕业于西南师范大学生物系本科,获理学学士,1999年毕业于中国科学院成都生物研究所,获理学硕士学位,2002年毕业于四川农业大学,获农学博士业学位。杂攻读硕士学位期间专业为植物生物技术,主要从事植物细胞和分子遗传学方面的研究,研究内容为水稻分子遗传学,构建了水稻雄性不育恢复基因的近等基因系并进行了分子评价。攻读博士学位期间,主要从事植物遗传学和基因组学研究。曾参与中国超级杂交水稻基因组计划。毕业后主要从事植物生物技术研究,曾在泰国正大集团正大生物科学(武汉)研究院生物技术中心任中心主任职,主要负责植物细胞工程和植物分子生物学研究,曾负责并参与了马铃薯脱毒和快速繁殖研究,兰花快速繁殖研究,水稻和玉米组织培养和转基因体系构建。2006年进入武汉工业学院生物与制药工程系工作,担任生物化学、遗传学、细胞工程、生物安全等课程教学工作。目前主要从事植物细胞工程研究,开展经济植物组织培养、快速繁殖和脱毒技术研究,中草药资源快速繁殖,濒危中草药资源的挽救,通过植物生物反应器生产现代中药活性成分研究,中药转基因体系构建和种质创新,资源植物遗传多样性评价及优良种质资源选育等工作。曾参与乳制品中三聚氰胺的快速检测与试剂、油菜QM基因克隆与功能分析等项目。目前承担校级科研项目一项、横向项目两项、教学项目一项。本人参与的相关研究已经发表论文7篇
目录第一章实验基本知识与基础技能(1)第一节生物化学实验室规则(1)第二节实验室安全和防护知识(2)第三节基础实验操作技能(6)第四节实验误差与提高实验准确度的方法(40)第五节实验记录与实验报告(45)第二章糖类物质的检测与分析(49)实验1糖的呈色反应和还原糖的检验(49)实验2苯酚硫酸法测定总糖浓度(51)实验3还原糖的测定3,5二硝基水杨酸比色法(54)实验4粗淀粉的测定1%盐酸旋光法(56)实验5血糖的测定磷钼酸比色法(59)实验6可溶性糖的硅胶G 薄层层析(61)实验项目拓展(64)第三章脂类物质的检测与分析(65)实验7粗脂肪含量的测定索氏抽提法(65)实验8油脂皂化与皂化值的测定(67)实验9碘值的测定韦氏法(68)实验10血清胆固醇的测定化学比色法(70)实验11卵磷脂的提取与鉴定(72)实验项目拓展(74)第四章氨基酸的检测与分析(75)实验12纸层析法分离鉴定氨基酸(75)实验13甲醛滴定法测定氨基氮含量 (77)实验项目拓展(79)第五章蛋白质的分离制备与分析(80)实验14蛋白质的两性反应与等电点的测定(80)实验15蛋白质的沉淀反应和颜色反应(82)实验16蛋白质含量测定(一)微量凯氏定氮法(MicroKjeldahl法)(87)实验17蛋白质含量测定(二)(91)Ⅰ双缩脲法(Biuret法)(91)Ⅱ考马斯亮蓝G250法(Bradford法)(93)ⅢFolin酚试剂法(Lowry法)(95)ⅣBCA法(98)Ⅴ紫外(UV)吸收测定法(99)实验18酪蛋白的制备(102)实验19凝胶层析法分离蛋白质(104)实验20血红蛋白的凝胶过滤(106)实验21蛋白质相对分子质量的测定SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳法(109)实验22血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳(117)第六章酶的分离制备与分析(121)实验23酶的特性底物专一性(121)实验24pH值对酶活性的影响(123)实验25温度对酶活性的影响(124)实验26血清谷丙转氨酶(ALT)活性的测定(126)实验27大麦萌发前后淀粉酶活性的测定(128)实验项目拓展(131)第七章维生素的检测分析(132)实验28植物中抗坏血酸含量的测定(132)实验项目拓展(133)第八章核酸的分离与分析(134)实验29植物基因组DNA的提取(134)实验30酵母RNA的分离与组分鉴定(136)实验31核苷酸的纸电泳(139)实验32紫外分光光度法测定核酸的含量(140)实验33RNA与DNA的测定(143)实验34定磷法测定核酸含量(145)实验35DNA的琼脂糖凝胶电泳(148)实验36质粒DNA的微量制备碱裂解法、煮沸法(151)实验37质粒DNA的酶切鉴定及琼脂糖凝胶电泳(156)实验38质粒DNA的大量制备与纯化(159)实验39大肠杆菌感受态细胞的制备与转化(162)实验40PCR基因扩增(167)实验项目拓展(169)第九章综合性与设计性实验 (170)实验41鸡蛋中卵清蛋白的提取和定量测定(170)实验42纤维素酶活性测定及pH值对其活性的影响(172)实验43酵母蔗糖酶的纯化及性质研究(176)Ⅰ酵母蔗糖酶的提取与纯化(176)Ⅱ蔗糖酶Km值测定及脲的抑制作用(178)ⅢpH值对酶活性的影响和*适pH值的测定(182)Ⅳ温度对酶活性的影响和反应活化能的测定(185)实验44正交法测定几种因素对酶活性的影响(187)实验45固定化酵母细胞及蔗糖酶活性的检测(191)实验46温度、pH值、激活剂和抑制剂对唾液淀粉酶活性的影响(193)实验47溶菌酶结晶的制备及活性测定(196)实验48橘皮果胶的提取及果冻的制备(200)实验49蛋白质免疫印迹杂交实验(202)实验50DNA片段的体外重组(205)实验项目拓展(207)附录实验室中常用参数(208)参考文献(209)